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尊龙凯时科研职员建设了成熟的大肠杆菌表达及纯化效劳平台 ，提供包括种种重组卵白以及其复合物在大肠杆菌中的表达与纯化服务。
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重组质粒构建；
重组表达测试；
可溶性表达条件测试；
小规模卵白表达和纯化（2L作育基作育产品）；
大规模卵白表达和纯化（10L以上）。
| 办法 | 实验内容 | 实验时间 | 备注 |
| 1 | 重组质粒构建 | 2 周 | 可选择差别载体 ，差别标签His, Trx , GST, SUMO… |
| 2 | 重组表达测试 | 1周 | 差别表达菌株可选 |
| 3 | 可溶性表达测试 | 1-2周 | 差别诱导剂 ，诱导温度 ，也可重新思量基于卵白质 结构点突变或者缺失突变的突变体构建 |
| 4 | 小规模卵白表达和纯化 | 1-2周 | 若为容纳体表达 ，时间和要领将有所调解 |
| 5 | 大规模卵白表达和纯化 | 凭证表达体积商定 | 可选择摇瓶或者发酵罐作育 |
大肠杆菌表达系统遗传配景清晰 ，目的基因表达水平高 ，作育周期短 ，抗污染能力强等特点, 是分子生物学研究和生物手艺工业化生长历程中的主要工具。因此熟练掌握并运用大肠杆菌表达系统的基来源理和通例操作是对每一个研究者来说是很是须要的。
1.1.1表达载体的选择
凭证启动子的差别这些载体大致可以分为热诱导启动子 ，如λPL ，cspA 等和另外一类就是普遍使用的IPTG诱导的启动子 ，如lac ，trc ，tac ，T5/lac operator ，T5/lac operator等。凭证表达卵白质的类型可分为纯粹表达载体和融合表达载体。融合表达是在目的卵白的N端或C端添加特殊的序列 ，以提高卵白的可溶性 ，增进卵白的准确折叠 ，实现目的卵白的快速亲和纯化 ，或者实现目的卵白的表达定位。常用的用于亲和纯化融合标签包括 Poly-Arg ，Poly-His, Strep-Tag Ⅱ ，S-tag ，MBP等。其中His-Tag 和GST-Tag 是现在使用最多的。His Tag 大大都是一连的六个His 融合于目的卵白的N端或C端 ，通过His 与金属离子：Cu2+>Fe2+>Zn2+>Ni2+ 的螯相助用而实现亲和纯化 ，其中Ni2+是现在使用最普遍的。His 标签具有较小的分子量 ，融合于目的卵白的N端和C端不影响目的卵白的活性 ，因此纯化历程中大多不需要去除。现在常使用的表达载体主要是由Novagen 提供的pET 系列和 Qiagen 公司提供的pQE 系列。
除了His 标签外 ，还原性谷胱甘肽S-转移酶是另一种实验室常用的融合标签。它可以通过还原性谷胱甘肽琼脂糖亲和层析而快速纯化。别的 ，与His 相比 ，GST 许多时间能够增进目的卵白的准确折叠 ，提高目的卵白表达的可溶性 ，因此 ，关于那些用his 标签表达易形成容纳体的卵白 ，可以实验用GST融合表达来刷新。虽然 ，GST 具有较大的分子量（26kDa） ，可能对目的卵白的活性有影响 ，因此许多时间切除GST是必需的。现在 ，GST融合表达系统主要是由GE Healthcare（原Amersham）提供。
1.1.2宿主菌的选择
重组质粒的构建一样平常选择遗传稳固 ，转化效率高 ，质粒产量高的菌株作为受体菌 ，常用的有E.coli DH5α ，E.coli JM 109 ，E.coli DH 10B ，E.coli NovaBlμe等recA–和endA–型细胞。作为表达宿主菌必需具备几个基本特点：遗传稳固 ，生长速率快 ，表达卵白稳固。详细操作历程中 ，凭证所使用的表达载体的特点 ，目的基因密码子的组成等选择特定的表达宿主菌。以下是实验室常用的几种表达宿主：
BL2： lon和ompT 卵白酶缺陷型 ，阻止了宿主对外源卵白的降解。是经典的使用最普遍的表达受体。适用于Tac ，Trc ，Lac ，λPL ，cspA等作为启动子的载体。
BL21（DE3）： DE3噬菌体溶源于BL21 形成的带有染色体T7 RNA 聚合酶基因大肠杆菌。IPTG 诱导的lacΜV5 启动子控制T7 RNA 聚合酶基因表达T7 RNA 聚合酶 ，进而控制T7 表达系统表达目的卵白。
BL21（DE3）衍生系列：在经典的T7表达系统BL21（DE3）的基础上 ，Novagen 公司开发了一些特殊的表达宿主细胞。好比：Origami （DE3） ，Origami B（DE3）和Rosetta-gami （DE3）菌株带有 trxB和gor双突变。拥有trxB和gor突变的菌株比单具 ，trxB突变的菌株更有可能增进二硫键的形成 ，使卵白可溶性更好 ，活性更高。
Rosetta? 系列：是经由修饰 ，专用于带有大肠杆菌有数密码子的真核卵白表达的菌株。经提高有数tRNA 水平 ，可以提高一些真核基因表达效率（更多信息可参考响应公司的资料）。
BL21-Codon Plus系列：包括BL21-CodonPlus? （DE3）-RIPL ，BL21-CodonPlμs?-RIL ，BL21-CodonPlμs?（DE3）-RIL, BL21-CodonPlμs?-RP ，BL21- CodonPlus? （DE3）-RP等。这些受体菌添加了大肠杆菌中编码精氨酸（R） ，亮氨酸（L） ，异亮氨酸（I）和脯氨酸（P）有数密码子的tRNA 基因 ，更多用于表达一些真核生物的基因。其中RIL系列常用于AT 含量高的基因 ，而RP系列主要用于GC含量高的基因（更多信息参考Stratagene 公司资料）。
M15/SG13009：自身表达T5 RNA polymerase ，主要用于pQE系列载体的表达。
另一个需要思量的是大肠杆菌的密码子及其偏幸性。
表1 大肠杆菌密码子使用频率统计
| T | AA | FRQ | C | AA | FRQ | A | AA | FRQ | G | AA | FRQ |
T | TTT | F | 19.7 | TCT | S | 5.7 | TAT | Y | 16.8 | TGT | C | 5.9 |
TTC | F | 15 | TCC | S | 5.5 | TAC | Y | 14.6 | TGC | C | 8 | |
TTA | L | 15.2 | TCA | S | 7.8 | TAA | stop | 1.8 | TGA | stop | 1 | |
TTG | L | 11.9 | TCG | S | 8 | TAG | stop | 0 | TGG | W | 10.7 | |
C | CTT | L | 12 | CCT | P | 8.4 | CAT | H | 15.8 | CGT | R | 21.1 |
CTC | L | 11 | CCC | P | 6.4 | CAC | H | 13.1 | CGC | R | 26 | |
CTA | L | 5.3 | CCA | P | 6.6 | CAA | Q | 12.1 | CGA | R | 4.3 | |
CTG | L | 46.9 | CCG | P | 26.7 | CAG | Q | 27.7 | CGG | R | 4.1 | |
A | ATT | I | 30.5 | ACT | T | 8 | AAT | N | 21.9 | AGT | S | 7.2 |
ATC | I | 30.6 | ACC | T | 22.8 | AAC | N | 24.4 | AGC | S | 16.6 | |
ATA | I | 30.7 | ACA | T | 6.4 | AAA | K | 33.2 | AGA | R | 1.4 | |
ATG | M | 30.8 | ACG | T | 11.5 | AAG | K | 12.1 | AGG | R | 1.6 | |
G | GTT | V | 16.8 | GCT | A | 10.7 | GAT | D | 37.9 | GGT | G | 21.3 |
GTC | V | 16.9 | GCC | A | 31.6 | GAC | D | 20.5 | GGC | G | 33.4 | |
GTA | V | 16.1 | GCA | A | 21.1 | GAA | E | 43.7 | GGA | G | 9.2 | |
GTG | V | 16.11 | GCG | A | 38.5 | GAG | E | 18.4 | GGG | G | 8.6 |
为了利便后续的纯化操作, 坚持目的卵白的活性,提高卵白的得率 ，我们在举行卵白的大宗制备之前应该首先确定目的卵白的最佳表达条件。首先 ，包管表达卵白稳固 ，只管阻止卵白酶的降解 ，我们可以通过使用一些卵白酶缺陷性的表达宿主 ，其次在表达的历程中可以在作育系统中添加一些卵白酶抑制剂等来解决。与实现外源卵白的稳固表达相比 ，更多时间包管目的卵白的可溶性表达 ，是建设表达条件的主要事情。许多外源基因在大肠杆菌表达时很容易形成不可容的容纳体 ，其缘故原由可能有：表达量过高 ，研究发明在低表达时很少形成容纳体 ，表达量越高越容易形成容纳体；卵白合成速率太快 ，以至于没有足够的时间举行折叠 ，二硫键不可准确配对；过多卵白间的非特异性连系 ，卵白质无法抵达足够的消融度等。现在对容纳体的形成和复性历程中爆发群集的机制尚不清晰, 但已经报道了许多用于优化表达以增添目的卵白可溶性的要领。
1.2.1确定表达状态
转化构建好的质粒至表达宿主感受细胞 ，挑取单克隆子至5ml 含有响应抗性的LB 作育基中 ，37℃ ，200 rpm ，作育至OD600=0.5左右 ，加入IPTG至终浓度0.2mM ，转移至28℃ ，200 rpm 继续诱导作育 ，可以在2h ，4h ，6h划分取样以剖析表达状态。
将取出的1ml 菌液12000 rpm 离心1min ，网络菌体 ，加入1ml PBS 缓冲液重悬沉淀 ，同样离心1min。再加入300～500ml PBS重悬细胞。
超声破碎细胞（详细见操作细胞破碎）
将破碎液体4℃ ，12000 rpm 离心10min ，疏散上清和沉淀。
SDS-PAGE 剖析上清和沉淀的卵白漫衍（详细操作参考SDS-PAGE）。
若在上清中有显着的目的卵白的条带 ，即可以放着述育进而纯化目的卵白。若目的卵白的表达主要漫衍于沉淀 ，则可以实验一下几种要领来改善表达。
改变表达载体下手 ，像GST ，NΜS ，MBP, TrxA等融合标签能够提高许多卵白在大肠杆菌中表达的可溶性 ，别的一些渗透标签如ompA,Pet-22b上的pelB也能够将目的卵白运输至细胞的周质空间 ，从而提高目的卵白的可溶性。
降低表达速率 ，可接纳低温诱导 ，如15℃诱导住宿 ，或者接纳弱启动子表达载体。
实验一些特殊设计的表达宿主Origami：thioredoxin redμctase/glμtathione redμctase 双突变适合带thioredoxin redμctase的融合表达载体 ，资助形成更多的二硫键。
关于一些卵白可能无法实现可溶性表达 ，这时间消融容纳体后再纯化是唯一的解决步伐。
1.2.2聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）
大肠杆菌表达纯化外源卵白 ，SDS-PAGE是必不可少的操作� ？梢杂美醇觳饴寻椎谋泶锴樾�(表达量 ，表达漫衍等) ，用来剖析纯化的目的卵白的纯度。本小节列出SDS-PAGE 操作中一些试剂的设置及其基本的操作历程。
1.2.2.1主要试剂的设置
（1）30%丙烯酰胺贮存液：29g丙烯酰胺和1g N,N’-亚甲双丙烯酰胺溶于100ml热水中 ，验证其pH值不大于7.0。置棕色瓶中 ，4℃生涯。
丙烯酰胺具有很强的神经毒性并可以通过皮肤吸收 ，其作用具累积性。称量丙烯酰胺和亚甲双丙烯酰胺时应戴手套和面具� ？梢晕郾０肺薅� ，但也应审慎操作 ，由于它还可能会含有少量未聚合质料。建议实验室划出专门的台面 ，设置单独的设置器皿举行SDS-PAGE 的相关实验。
（2）1.5mol/L Tris（pH8.8）溶液。
（3）10% SDS溶液：SDS 10.0g 加入ddH2O ToTo100。
（4）10%过硫酸铵：新鲜配制。
（5）TEMED溶液：4℃生涯。
（6）1.0 mol/L Tris（pH6.8）溶液。
（7）2×样品消融液：2%SDS ，5%巯基乙醇 ，10%甘油 ，0.02%溴酚蓝 ，0.01mol/L Tris-HCl（pH8.0）缓冲液。
（8）5×Tris-甘氨酸电极缓冲液： 15.1g Tris ，94g甘氨酸和5g SDS定容到1000ml（建议每次电泳用新稀释的缓冲液）。
（9）考马斯亮蓝R染色液：每100ml甲醇、水、冰乙酸混淆物（9:9:2）中 ，消融0.25g考马斯亮蓝R ，搅拌消融。
（10）脱色液：10%冰醋酸（可加如乙醇 ，建议不要使用甲醇）。
1.2.2.2主要操作办法
1、凝胶制备
（1）装置洗涤清洁的玻璃板、板条 ，并将玻璃板牢靠在电泳槽中。
（2）配制10%的疏散胶（详细参考表2）：迅速在两玻璃板间隙中灌注疏散胶 ，直至剩余的板宽比梳子长度多1cm。小心在胶上笼罩一薄层异丙醇或水。
（3）在疏散胶聚合的历程（可置于37℃ ，约10min）中 ，配制5%的积层胶（参考表格3）。
（4）疏散胶聚合完全后 ，倒去异丙醇或水 ，用滤纸吸干胶面上的剩余。
（5）灌注积层胶 ，连忙插入清洁的梳子 ，阻止爆发气泡。
（6）积层胶聚合完全后 ，小心拔出梳子 ，拨去封胶用的塑料条 ，牢靠于电泳槽。
（7）在上下电泳槽中加入足够的电泳缓冲液。
2、样品的制备
在卵白溶液中加入等体积的2×样品消融液 ，混淆液在滚水浴中加热5min ，冷却后即可上样。
3、上样
用微量移液器上样 ，每加入一种样品 ，上样量凭证凭证详细的样品浓度确定 ，未知浓度一样平常用10微升。
4、电泳
关于一块胶 ，在浓缩胶中电流设置在15～20mA, 当染料进入疏散胶后可设置电压至电流约为25～30mA ，继续电泳直至染推测达离凝胶底部1cm处。
5、后处置惩罚
（1）染色：加入染色液（用量同上） ，室温染色30min～1h。
Tip：染色前可将染色液在微波炉里加热至沸 ，然后摇床震荡染色约10min即可。
（2）脱色：将染色后的胶块用水洗涤三次去除外貌染料 ，然后加入脱色液脱色 ，其间替换脱色液3～4次至条带清晰。
Tip：10min快速脱色:将脱色液置于微波炉煮沸 ，替换三次脱色液。
表2. 配制SDS-PAGE 差别浓度疏散胶的设置
差别体积（ml）凝胶液中各因素所需体积（ml） | |||||||
Gel% | 组成 | 所需要各成份体积（ml） | |||||
5 | 10 | 15 | 20 | 25 | 30 | ||
6% | 水 | 2.6 | 5.3 | 7.9 | 10.6 | 13.2 | 15.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.004 | 0.008 | 0.012 | 0.016 | 0.02 | 0.024 | |
8% | 水 | 2.3 | 4.6 | 6.9 | 9.3 | 11.5 | 13.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 1.3 | 2.7 | 4 | 5.3 | 6.7 | 8 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.003 | 0.006 | 0.009 | 0.012 | 0.015 | 0.018 | |
10% | 水 | 1.9 | 4 | 5.9 | 7.9 | 9.9 | 11.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 1.7 | 3.3 | 5 | 6.7 | 8.3 | 10 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.002 | 0.004 | 0.006 | 0.008 | 0.01 | 0.012 | |
12% | 水 | 1.6 | 3.3 | 4.9 | 6.6 | 8.2 | 9.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 2 | 4 | 6 | 8 | 10 | 12 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.002 | 0.004 | 0.006 | 0.008 | 0.01 | 0.012 | |
15% | 水 | 1.1 | 2.3 | 3.4 | 4.6 | 5.7 | 6.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 2.5 | 5 | 7.5 | 10 | 12.5 | 15 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.002 | 0.004 | 0.006 | 0.008 | 0.01 | 0.012 | |
差别体积（ml）凝胶液中各因素所需体积（ml） | |||||||
Gel% | 组成 | 所需要各成份体积（ml） | |||||
5 | 10 | 15 | 20 | 25 | 30 | ||
6% | 水 | 2.6 | 5.3 | 7.9 | 10.6 | 13.2 | 15.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.004 | 0.008 | 0.012 | 0.016 | 0.02 | 0.024 | |
8% | 水 | 2.3 | 4.6 | 6.9 | 9.3 | 11.5 | 13.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 1.3 | 2.7 | 4 | 5.3 | 6.7 | 8 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.003 | 0.006 | 0.009 | 0.012 | 0.015 | 0.018 | |
10% | 水 | 1.9 | 4 | 5.9 | 7.9 | 9.9 | 11.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 1.7 | 3.3 | 5 | 6.7 | 8.3 | 10 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.002 | 0.004 | 0.006 | 0.008 | 0.01 | 0.012 | |
12% | 水 | 1.6 | 3.3 | 4.9 | 6.6 | 8.2 | 9.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 2 | 4 | 6 | 8 | 10 | 12 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.002 | 0.004 | 0.006 | 0.008 | 0.01 | 0.012 | |
15% | 水 | 1.1 | 2.3 | 3.4 | 4.6 | 5.7 | 6.9 |
30%丙烯酰胺溶液 | 2.5 | 5 | 7.5 | 10 | 12.5 | 15 | |
1.5mol/LTris(pH8.8) | 1.3 | 2.5 | 3.8 | 5 | 6.3 | 7.5 | |
10%SDS | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
10%过硫酸氨 | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0.3 | |
TEMED | 0.002 | 0.004 | 0.006 | 0.008 | 0.01 | 0.012 | |
Gel% | 组成 | 所需要各成份体积（ml） | |||||
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | ||
5% | 水 | 0.68 | 1.4 | 2.1 | 2.7 | 3.4 | 4.1 |
30%丙烯酰胺溶液 | 0.17 | 0.33 | 0.5 | 0.67 | 0.83 | 1.0 | |
1.0mol/LTris(pH6.8) | 0.13 | 0.25 | 0.38 | 0.5 | 0.63 | 0.75 | |
10%SDS | 0.01 | 0.02 | 0.03 | 0.04 | 0.05 | 0.06 | |
10%过硫酸氨 | 0.01 | 0.02 | 0.03 | 0.04 | 0.05 | 0.06 | |
TEMED | 0.01 | 0.02 | 0.03 | 0.04 | 0.05 | 0.06 | |
大肠杆菌细胞破碎有许多要领 ，譬如重复冻融法 ，渗透攻击 ，超声破碎 ，压力破碎等。其中超声破碎和压力破碎破碎是我室常用要领。
1.3.1超声破碎
在建设表达条件历程中 ，小量制备样品可用小型超声细胞破损仪。离心1.0～1.5ml 诱导后的菌液网络菌体 ，然后视菌体的量加入300～500μl的缓冲液重悬细胞 ，然后置于冰上超声破碎。因许多实验室有自己的小型超声破损器,各个操作不尽相同 ，详细操作参考仪器说明书。通例操作办法如下（以100ml 作育液为例）：
（1）100 ml 诱导后的菌液（OD600=1.2 左右） ，12000 rpm ，4℃离心2min ，网络菌体。
（2）加入预冷的缓冲液50ml ，重悬细胞洗涤菌体一次 ，12000 rpm ，4℃离心2min ，网络菌体；通例的操作所使用的缓冲液多为PBS 或者 Tris-NaCl ，针对差别的载体和纯化要领 ，选择响应的缓冲液。关于一些卵白酶敏感的目的卵白 ，可以在整个操作历程中加入一些卵白酶抑制剂。
（3）向沉淀中加入15ml的缓冲液同上（若菌体太浓 ，可加倍） ，充分悬浮 ，将菌悬液装在一个玻璃小烧杯中 ，置于冰水混淆物中。
（4）破碎：将用缓冲液洗涤过的超声探头伸入到菌液中 ，不要接触烧杯底部 ，每处置惩罚30sec距离1min使菌液冷却 ，输出强度为5～6 ，频率为60～70％。
（5）疏散上清和沉淀：12000 rpm ，4℃离心20min ，疏散上清和沉淀。
（6）SDSPAGE 剖析卵白表达情形。
（7）准备纯化卵白。
超声破碎注重事项与一些小的刷新：
（1）破碎完全的判断：超声前菌悬液是污浊的 ，超声完全后变的透明、清亮。
（2）若是超声时泛起玄色沉淀 ，说明超声功率太强。
（3）超声时间太长、功率太高对卵白活性一定有影响。
（4）只管避免泡沫的爆发。
（5）大宗破碎时将菌液置于一玻璃器皿中 ，破碎时放在冰水混淆物中 ，以增添散热 ，减小对卵白的破损作用。
（6）破碎前的预处置惩罚 ，在破碎前可用溶菌酶（100μg/ml）处置惩罚破环细胞壁（10min ，30℃） ，增添细胞的通透性。
1.3.2压力破碎
高压破碎是大宗的破碎提取细胞内成份的首先要领 ，相关于超声破碎 ，它具有历程温顺 ，操作迅速等优点 ，详细使用需要凭证详细的仪器使用说明。
FRENCH? PRESS 细胞破碎仪标准操作规程
（1）使用前将高压腔、底座、活塞杆在4℃冰箱中预冷30min。
（2）将三脚牢靠器置于水平桌面上 ，将高压腔正放在牢靠器器上；在活塞杆的O型环、底座的O型环和针形阀的O型环上匀称涂上少量凡士林。
（3） 把活塞杆正向插入高压腔至最大加样线 ，将整个腔体连同活塞杆一起倒转牢靠在牢靠器上。
（4） 将菌液倒入腔体 ，最大处置惩罚量为35ml ，最小为5ml。视样品体积 ，大致预计并调解活塞杆的位置。
（5）将针形阀和样品喷射管装配于底座上 ，针形阀拧到轻轻不可拧动为止 ，并向反偏向稍微松动 ，包管阀门处于开启状态（注重：务必不可用力拧紧 ，不然会降低其密封性）。把底座倒扣于腔体上 ，向上调解活塞杆的位置 ，直至腔内空气完全倾轧 ，流出一滴样品为止 ，轻轻旋紧针形阀。
（6）双手托起整个高压腔组件 ，翻转至正向位置 ，将其置于升降台上（事先要确保操作台足够的低 ，以容的下整个组件） ，向后推动底座 ，使底座牢靠于三个位置校准针之间 ，并调解腔体使针形阀朝向正面。将牢靠夹牢靠于支持杆上 ，拧紧牢靠夹上的两个螺丝以牢靠腔体。将活塞杆上的手柄转至与牢靠夹笔直的偏向。
（7） 翻开电源 ，将档位手柄转至HIGH档 ，顺时针旋转压力控制阀至50psi ，升降台最先上升 ，当活塞杆接触上顶台后 ，继续顺时针旋转压力控制阀 ，直至压力抵达需要的压力（大肠杆菌的破碎压力一半设定为12000psi ，芽孢杆菌设定为2000psi）。
（7）取一冰预冷的离心管（或者将离心管至于冰中）置于样品喷射管出口处 ，轻轻逆时针转动针形阀 ，小心控制样品的流出速率 ，凭证破碎水平决议流速（建议在喷射管出口处接一个1cm长的透明的塑料管如输液管 ，通过视察塑料管流出样品的透明度来判断破碎是否完全）。当活塞杆上的清静指示线（Stop Line）降至腔体上外貌时 ，迅速关紧针形阀（不要过紧） ，旋转档位手柄至DOWN位置。待升降台完全下降后 ，继续降低压力至零 ，关闭电源。
（8）松开牢靠夹 ，取出高压腔 ，重新倒置于三脚牢靠器上 ，取出底座。将各部分拆开 ，彻底洗濯。底座及喷射管的内壁要重点冲洗 ，涂有凡士林处要用洗洁精彻底洗净。
【注重事项】
（1）仪器最大遭受压力为4000psi（指示针2500）。
（2）各O形环处（包括样高压腔 ，底座 ，活塞杆和针形阀）一定要涂凡士林润滑 ，以降低磨损 ，避免损伤。
（3）压力的升高或降低速率要控制在一定规模内。升高压力前务必包管整个组件牢靠于升降台上,任何的松动可能导致事故。
（4）活塞杆的手柄要与牢靠夹笔直 ，不然会爆发危险。
（5）严禁将出样阀太过拧紧 ，不然会损坏内部撞针 ，以不流出液体为准。
（6）严禁使活塞杆下至清静线以下 ，不然会导致活塞杆与底座损坏。
（7）使用完毕要将压力控制阀转至压力为零。
（8）各部件洗濯要彻底 ，不然底座小孔容易堵死 ，活塞杆上残留的菌体会在未洗净的凡士林上滋生。
（9）恒久不必应生涯在干燥的情形中 ，须要时可涂凡士林避免生锈。
（10）压力腔的空气一定要完全倾轧 ，不然当样品完全倾轧时 ，造成活塞与压力池底座直接接触 ，造成损伤 ，由于压力很是大 ，有可能导致活塞或压力池底座变形 ，造成永世性损伤！
（11）在挪动装好的样品池时 ，一定要双手 ，一手扶住住高压腔 ，一手托住底座 ，避免底座脱落而造成事故。
（12）O型环若老化则实时替换。
（13）操作历程中榨取将液体溅入机箱内部。
（14）仪器使用历程中泛起故障应实时与认真人联系。
1.4.1 His Tag 纯化操作实例
本实验室中所用的表达载体pET28a（+）中含有一个编码多聚组氨酸的序列 ，即His-Tag ，因此会获得带有His-Tag的重组目的卵白。His-Tag可与金属Ni2+离子连系 ，从而有利于目的卵白的纯化。加上了His-Tag的卵白在非变性的条件下可用Ni2+亲和层析柱纯化。纯化卵白的原理是：当亲和层析柱负载了Ni2+后 ，可以选择性吸附袒露在卵白外貌具有重大结构的氨基酸残基（特殊是组氨酸残基）。卵白质中含有的组氨酸越多 ，与Ni2+连系的特异性就越高 ，则将其洗脱下来会需要更高的咪唑浓度。含有组氨酸标签的目的卵白与细胞中的总卵白相比 ，具有更高的Ni2+连系特异性。为了获得具有较高纯度的目的卵白 ，必需找到一个合适咪唑浓度的洗脱液（连系缓冲液） ，在此浓度下非特异性的杂卵白能从柱上洗脱下来 ，而与Ni2+特异性连系的目的卵白不会被洗脱。最后用更高咪唑浓度的缓冲液（洗脱缓冲液）将目的卵白洗脱下来 ，此时目的卵白特异性的保存于该咪唑浓度的洗脱液中 ，从而获得纯化了的目的卵白质。
1.4.1.1 重组卵白的诱导
（1）载体构建：本实验接纳pET-28a（+）表达载体 ，克隆受体菌为E.coli DH5α ，表达宿主为E.coli BL21(DE3)。详细操作参考基因克隆与转化部分。
（2）挑一个转化重组质粒的单菌落接种于LB液体作育基中（含100μg/m卡那霉素和） ，于37℃住宿作育。
（3）取1ml住宿作育物 ，转接于100ml含100μg/ml卡那霉素的LB液体作育基中 ，于37℃作育1.5～2小时至对数生恒久。
（4）在作育物中加入异丙基硫代半乳糖苷（IPTG）至终浓度为0.2 mM ，凭证预先建设的最佳表达条件举行诱导表达。
（5）1200 rpm ，离心2min ，网络菌体。
（6）弃上清 ，向沉淀中加入500ml Starting buffer（20mM磷酸缓冲液（Na2HPO4和NaH2PO4） ，200mM NaCl ，10% 甘油 ，pH 7.0） ，充分悬浮洗涤菌体。
（7）12000 rpm ，离心2min ，网络菌体。
（8）向沉淀中加入15ml的starting buffer ，重悬菌体。
（9）冰浴条件下超声波处置惩罚3min ，每处置惩罚30sec距离1min使菌液冷却 ，输出强度为5～6 ，频率为60～70％ ，处置惩罚时以不爆发气泡 ，不过热为准 ，以菌液变清晰为终止标准。
（10）12000 rpm ，4℃离心20min ，将上清移到清洁灭过菌的50ml离心管。
SDS-PAGE 剖析卵白的表达情形。若目的卵白漫衍在上清中 ，继续举行下面的纯化操作。
1.4.1.2 目的卵白的体外纯化
（1）灌制好Ni2+-NTA亲和层析柱 ，用去离子水举行缓慢洗脱 ，阻止在柱床中引入气泡。
（2）用10倍柱床体积的starting buffer举行预平衡 ，上样 ，将细胞破碎后的上清液注入Ni2+-NTA亲和层析柱中。
（3）用10倍ml的starting buffer举行漂洗 ，网络滤过液。
（4）最先用5倍柱床体积的含20 mM咪唑的starting buffer举行洗脱 ，并对洗脱液举行网络。
（5）依次用5倍柱床体积的含40 mM ，60 mM ，80 mM ，100 mM ，200 mM ，300 mM和500 mM咪唑的starting buffer举行洗脱 ，划分对洗脱液举行网络。
（6）通过SDS-PAGE检测接纳的效果 ，确定咪唑最合适洗脱浓度。
（7）从每管网络的滤出液取出10μl的样品 ，加入10μl的2X SDS凝胶加样缓冲液 ，摇匀。
（8）滚水浴处置惩罚3min。
（9）取出样品 ，将10μl样品所有上样于适当浓度的SDS聚丙烯酰胺凝胶上电泳。
【注重事项】
（1）样品可贮存于4℃ ，以备在聚丙烯酰胺凝胶上加样。
（2）用考马斯亮蓝或银染液举行染色 ，检测重组卵白的纯化水平 ，并找到咪唑最合适洗脱浓度 ，也就是纯化卵白含量最多的一管洗脱液所对应的浓度；并将该纯化出来的卵白质经由PD-10柱子以去掉溶液中的咪唑。
（3）卵白质被洗脱完成之后 ，要实时地洗濯柱子 ，使柱子能重复使用。
（4）在下次对统一卵白的纯化历程中 ，即可凭证胶图所显示的个洗脱液中卵白浓度的情形来优化整个洗脱历程。
卵白质溶液的去盐处置惩罚（使用PD-10去盐柱）
（1）用10ml的starting buffer平衡PD-10去盐柱。
（2）上样：往PD-10去盐柱中加入2.5ml的卵白质溶液。
（3）用10ml的starting buffer去洗PD-10去盐柱 ，最先网络滤出液 ，每1ml网络一管。离心管应该先在冰上预冷。
（4）电泳检测重组卵白质的纯化水平。
（5）详细要领和历程与上面办法一致。
（6）选择合适的纯化卵白样品 ，加入1倍体积的预冷甘油。接着将卵白质样品置于－80℃生涯 ，以备使用。
【注重】PD-10去盐柱可以多次重复使用 ，可是不可使柱子变干 ，生涯时应该用响应的缓冲液浸泡 ，并且置于4℃。
图 1：PD-10去盐柱除去盐离子示意图（载自Amersham Biosciences产品说明）
1.4.1.3 His-tag NOTE
（1）若His标签卵白没有连系 ，请依次检查：
可能缘故原由1：样品或者是连系缓冲液不准确。战略：检测pH 及样品和连系缓冲液的组成份。确保在溶液中鳌合剂或强还原剂的浓度及咪唑的浓度不是太高。
可能缘故原由2：组氨酸的标签没有完全的袒露。战略：在变性条件下(用4～8 M 脲 ，或4～6 M盐酸胍)举行纯化。
可能缘故原由3：HIS标签丧失。战略1：WB或者anti-his的抗体检查His是否表达 ，上游构建 ，改变his-tag的位置(C-terminal or N-terminal) ，须要时增添his个数(常用6～10个)；战略2：孵育的时间不敷 ，降低流速和增添孵育的时间；战略3：改变螯合的金属离子 ，寻找到最佳的连系金属离子。
（2）若没有洗脱下来 ，请依次检查：
可能缘故原由1：洗脱条件太温顺（组氨酸标记的卵白质仍然连系在柱上 ，结协力较强）。战略：用增添咪唑的梯度洗脱或降低pH来找出最佳的洗脱条件。
可能缘故原由2：降低PH的要领洗脱的 ，由于若PH低于3.5 ，会导致镍离子脱落。战略：改变洗脱步伐 ，咪唑竞争性洗脱。
可能缘故原由3：卵白已沉淀在柱上。战略：镌汰上样量 ，或使用咪唑的线性梯度而不是分步洗脱以降低卵白的浓度。试用去污剂或改变NaCl的浓度 ，或在变性条件(去折叠)下洗脱(用4～8 M脲 ，或4～6 M 盐酸胍)。
可能缘故原由4：非特异性疏水或其他相互反应。战略：加非离子去污剂到洗脱缓冲液（如 ，2%Triton X-100）或增添NaCl的浓度。
（3）HIS标签卵白洗脱后杂带较多 ，什么缘故原由? 怎样优化?
高纯度的卵白是纯化事情者的追求 ，可是由于许多自然的卵白也会带有HIS ，以是经�；岱浩餒IS标签卵白洗脱后有一些杂带 ，可能的缘故原由和优化的要领如下：
可能缘故原由1：卵白酶部分降解了标签卵白。战略：请添加卵白酶抑制剂 ，（慎用EDTA）。
可能缘故原由2：杂质对镍离子有更高的亲和性。战略1：咪唑浓度必需优化 ，以确保高纯度（宿主细胞卵白质的低连系）和高产率（组氨酸标记的目的卵白质的强连系）之间的最佳平衡。分步或者线性洗脱探索出最优的咪唑连系和洗濯浓度；在样品中加入与连系缓冲液同样浓度的咪唑；咪唑的梯度不大（20个或更多的柱床体积） ，可能疏散出有相似连系强度的卵白。战略2：筛选最适合的缓冲液条件 ，NaCl浓度 ，PH的规模都需要举行筛选 ，以便决议最适的连系和洗脱条件。关于简单目的卵白在举行缓冲液筛选时 ，将缓冲液、盐、甘油和还原剂设计成几个差别的混淆配方。
可能缘故原由3：杂质和标签卵白连系在一起。战略：在超声破碎细胞之前加入去垢剂或者还原剂；增添去垢剂的浓度 ，（2 % Triton X-100 or 2 % Tween 20）；或者在wash buffer中增添甘油的浓度（50%）镌汰非特异性的相互反应；思量增添咪唑的浓度或者改变金属离子
可能缘故原由4：洗涤不充分。战略：增添洗涤的次数,使洗涤充分。
1.4.1.4 NTA树脂的再生
NTA树脂在使用若干次数（3～5次）后 ，连系效率有所下降 ，可以用以下要领再生 ，提高树脂的使用寿命和卵白质的连系效率。注重：NTA树脂再生前需要从层析柱下端流干所有溶液 ，预计出NTA的树脂体积 ，按下列序次将再生试剂加到层析柱里 ，在等上一再生溶液流干后 ，再加下一再生消融。用户需要自行准备25% ，50% ，75% ，100%（v/v）乙醇和去离子水。
NTA再生办法：
（1）从层析柱下端流干所有溶液 ，用2倍NTA树脂体积的0.2M Acetic Acid/6M gμanidine HCl 洗。
（2）用2倍体积的去离子水洗。
（3）用3倍体积的2% SDS洗。
（4）用1倍体积的25%乙醇洗。
（5）用1倍体积的50%乙醇洗。
（6）用1倍体积的75%乙醇洗。
（7）用5倍体积的100%乙醇洗。
（8）用1倍体积的75%乙醇洗。
（9）用1倍体积的50%乙醇洗。
（10）用1倍体积的25%乙醇洗。
（11）用1倍体积的去离子水洗。
（12）用5倍体积的0.1M EDTA pH8.0洗。
（13）用3倍体积的去离子水洗。
（14）若是立纵然用 ，用5倍体积的100mM NiSO4.6H2O洗 ，再用10倍体积的平衡溶液（NTA-0 buffer或GμNTA-0 buffer）洗。
（15）若是想恒久贮存 ，加入1倍体积的20%乙醇 ，4度生涯 ，使用前需要执行办法14。
1.4.2 GST 亲和标签的纯化
谷胱甘肽S- 转移酶（GST）是继组氨酸之后的第二个应用最多的重组卵白标记。GST 融合于目的卵白的N端 ，可以通过谷胱甘肽-琼脂糖亲和层析举行纯化。由于GST 对底物还原性谷胱甘肽的亲和力是亚摩尔级的 ，因此谷胱甘肽固化于琼脂糖形成的亲和层析树脂对GST 及其融合卵白的纯化效率很高。用1ml 的树脂纯化1L 的大肠杆菌作育物可获得的目的卵白产率为0.1～6.0 mg。
GST 亲和纯化融合卵白主要包括连系 ，洗涤 ，洗脱三个办法 ，全历程只需要一到两种缓冲液 ，可以大宗纯化 ，也可以小量的实现快速纯化。很是适合实验室小量制备大肠杆菌重组卵白。下面以克隆到表达载体pGEX-6p-1上的GFP 表达纯化为例 ，先容一种小量快速的纯化要领 ，供各人参考。卵白的诱导与样品的制备要领基本同上。
1.4.2.1 GST 亲和标签纯化的使用
（1）从4℃冷柜中取出Glμtathione Sepharose 4B（本产品购置GE公司 ，贮存于20%乙醇 ，树脂的量和20%乙醇1：1） ，轻柔、充分翻转摇匀树脂悬浊液。
（2）用宽嘴吸头吸收1ml 的脂浆 ，加入到装有40ml 的PBS(整个操作历程所有的PB均需预冷) V型离心管中 ，轻柔倒置数次 ，洗涤除去残留的20%乙醇 ，2000 rpm ，离心5min ，小心倾倒出PBS。
（3）将破碎后的上清加入平衡上一办法中的树脂中 ，轻轻混匀 ，4℃振荡温育 ，500 rpm ，1h ，时代一直混匀 ，避免树脂沉淀 ，保GST-GFP 充分连系于树脂上。
（4）2000 rpm ，离心5min ，小心倾倒出上清。
（5）向沉淀中加入约40ml 的PBS ，轻柔混匀 ，振荡温育10 min ，2000 rpm ，离心5min ，小心倾倒出上清。
（6）重复办法（5）一次 ，然后向沉淀中加入5ml 的PBS 悬浮树脂 ，并将悬浮液转移到一个10ml 的塑料层析柱 ，并翻开阀门放掉PBS。
（7）洗脱网络目的卵白。凭证实验需要差别有两种要领来网络目的卵白。
要领一：是不切除GST-tag ，可以向（6）中的树脂中加入1～2ml 的洗脱缓冲液（50 mM Tris-HCl ，10 mM 还原性谷胱甘肽（GSH） ，pH 8.0） ，轻轻混匀然后4℃温育10min ，网络流出液 ，即为GST-GFP的纯化产品。
要领二：是纯化不含GST-tag 的卵白 ，凭听说明书将卵白酶PreScission Protease（GE公司）用PBS 稀释到到1ml ，加入到（6）中的树脂中 ，轻轻混匀然后4℃温育12h ，网络流出液 ，即为GFP的纯化产品。
（8）SDS-PAGE 剖析纯化的卵白� ？梢远圆僮骼讨械拿恳徊饺⊙傩蠸DS-PAGE剖析。
1.4.2.2 Glμtathione Sepharose 4B 再生
GST?Bind树脂可以重复使用数次而无需再生。但随着非特异性连系的卵白的增多和卵白的群集 ，往往会造成流速和连系载量都下降。为了去除连系在树脂上的卵白 ，可以用10倍体积的50mM Tris-HCl ，0.5M NaCl ，pH8.0洗树脂 ，接着用10倍体积的100mM醋酸钠pH4.5 ，0.5M NaCl再洗一次。其它可以选用做去除污染卵白的缓冲液还包括：6M尿素 ，6M盐酸胍或低极性溶剂 ，如50～70%乙醇或50%乙二醇。任何上述处置惩罚后应该连忙用10倍柱体积1X GST Bind/Wash buffer平衡。树脂可以在4℃下 ，20%乙醇/80%水中长时间存放。
1.4.2.3 GST使用历程中可能的问题与对策
（1）目的卵白连系效率低
连系条件差池：仔细核对种种溶液、缓冲液的因素和pH。低于pH6.5或高于pH8时 ，融合卵白与GST?Bind树脂会连系不充分。确保树脂在与细胞裂解液连系前经由pH6.5～8.0缓冲液（如1X GST Bind/Wash buffer ，PBS）的平衡细胞裂解前加入DTT会显著改善某些GST融合卵白与GSTBind树脂的连系
GST融合卵白被超声打断降解：太过超声会破损带标签的卵白而镌汰其与树脂的连系。接纳温顺的超声条件或改用其它的破碎要领。
卵白的折叠问题：GST 标签不可够准确的折叠难以连系GSH的底物。
（2）卵白难以洗脱
洗脱体积太少：有时需要使用更多的缓冲液洗脱目的卵白。
洗脱缓冲液不新鲜： 10XGST洗脱缓冲液－20℃下可以稳固存放6个月 ，最多耐受5次冻融。每次在临纯化前新鲜配制1X洗脱缓冲液
洗脱缓冲液中谷胱甘肽浓度太低：GST?Bind树脂的还原型谷胱甘肽浓度抵达10mM就够了。可是洗脱时需要的还原型谷胱甘肽的浓度需要抵达75mM。
（3）纯化的卵白杂质许多
表达的卵白不完整：再遇到一些有数密码子或者特殊的RNA的二级结构时 ，可能使得目的卵白截短表达 ，可接纳一些特殊的表达宿主 ，如Rosetta系列。
洗涤体积不敷：增添洗脱量。
洗脱条件：可已在洗脱缓冲液中加入一定量的非离子去污剂 ，如0.1%的Triton-100 或NP-40等。也可以实验提高洗脱时NaCl 的浓度 ，以降低非特一性的连系。
操作历程中目的卵白降解：控制操作条件 ，好比严酷4℃操作 ，缓冲液中加入卵白酶抑制剂 ，
超声处置惩罚太过：镌汰超声 ，阻止发泡导致卵白变性。太过超声还会增添宿主内源卵白与GST融合目的卵白共纯化
共价共纯化：胶上有些多出来的条带是共纯化的增进卵白准确折叠的分子朋侪 ，如：DnaK（70kDa） ，DnaJ（37kDa） ，GrpE（40kDa） ，GroEL（57kDa） ，和GroES（10kDa） ，再举行一次纯化可以改善。
1.4.3 MBP 亲和标签的纯化
原理：pMAL?系统是一种高效的卵白融合表达及纯化系统。pMAL载体含有编码麦芽糖连系卵白（Maltose Binding Protein, MBP）的大肠杆菌malE基因 ，其下游的多克隆位点便于目的基因插入 ，表达N端带有MBP的融合卵白。通过“tac”强启动子和malE翻译起始信号使克隆基因获得高效表达 ，并进一步使用MBP对麦芽糖的亲和性抵达用Amylose柱对融合卵白的一步亲和纯化。
此系统的pMAL载体含有LacZα基因 ，目的基因的插入导致其失活 ，通过X-gal平板可举行蓝白斑筛选。 pMAL载体都含有一段编码卵白酶识别位点的序列 ，融合卵白纯化后 ，通过Factor Xa（X） ，Enterokinase（E）或GenenaseTM I（G）可将目的卵白与MBP切割疏散。
pMALTM-c2 系列载体缺失malE 信号序列 ，导致融合卵白在细胞质中表达。pMAL-p2系列载体含有malE 信号序列 ，它可指导融合卵白穿过胞质膜 ，进入周质。所有这些载体都含有一段编码卵白酶识别位点的序列 ，融合卵白纯化后 ，通过Factor Xa（X） ，Enterokinase（E）或GenenaseTM I（G）可将目的卵白与MBP切割疏散。
Amylose 树脂预装柱是一亲和基质 ，用来疏散与麦芽糖连系卵白融合的目的卵白。
连系容量：每毫升柱床体积可连系3.0 mg MBP-Paramyosin 融合卵白。
贮存：本品预膨胀在20%的乙醇中 ，4°C贮存。
过柱缓冲液：20 mM Tris-HCl ， pH7.4 ，200 mM NaCl ，1 mM EDTA。
添加剂：1 mM sodiμm azide；10 mM β－mercaptoethanol 或1 mM DTT。
洗脱缓冲液：过柱缓冲液+10 mM 麦芽糖
实验办法：
（1）重组质粒的构建 ，转化 ，融合卵白的诱导表达和细胞破碎同上。
（2）融合卵白的亲和纯化：
预装柱用8～12倍柱床体积的双蒸水冲洗；
预装柱用9倍柱床体积过柱缓冲液平：
将上述实验办法三的上清液加入到柱床内 ，控制流速0.5～1 ml/min（建议每次上样2～4ml）。
用12倍柱床体积的过柱缓冲液淋洗未连系卵白 ，每次用6ml ，共4次。
用4倍柱床体积的洗脱缓冲液洗脱与Amylose树脂连系的MBP融合卵白 ，控制流速约0.5～1 ml/min。网络3～5管样品洗脱液 ，收整体积为1 ml/每管。通常 ，含目的卵白的融合卵白在一个柱床体积内将被洗脱下来 ，可以通过波长为280 nm的紫外吸收光或考马斯亮蓝卵白检测法举行检测。
SDS-PAGE检测洗脱样品*。
再生。每次纯化卵白完毕后 ，需要实时对Amylose树脂举行再生。 Amylose树脂可以接纳下述洗濯办法举行再生
【注重事项】
（1）每次使用时 ，请先翻开顶端的帽子再移去底部的帽子 ，以阻止气泡进入到预装柱内。
（2）在使用本预装柱时 ，请使用经由脱气后的缓冲液 ，以阻止爆发气泡。
（3）预装柱在每次使用完毕后 ，在柱床上方加入2～4 ml 缓冲液或水 ，盖上顶端的帽子后 ，随即盖上底部的帽子 ，直立安排于4℃贮存。
（4）恒久贮存时应贮保存含0.02％叠氮钠的缓冲液中或20％乙醇中 ，以阻止染菌。
【pMAL系统的优势】
（1）75%的卵白可获得高效表达 ，卵白产量可达100 mg/L
（2）与其他几种常用表达系统研究较量 ，与MBP融合表达更能提高E. coli表达卵白的可溶性。
（3）接纳麦芽糖温顺洗脱：无去污剂或变性剂对卵白活性的影响。
（4）可在细胞质或周质中表达（pMAL-p2X载体）：周质表达可提高二硫键的形成 ，增进卵白折叠的形成。
8.5.1目的卵白的浓缩
卵白的浓缩液是卵白纯化历程中常用的操作 ，常用的要领有：
（1）透析袋浓缩法
使用透析袋浓缩卵白质溶液是应用最广的一种。将要浓缩的卵白溶液放入透析袋（无透析袋可用玻璃纸取代） ，结扎 ，把高分子（6 000～12 000）聚合物如聚乙二醇（碳蜡）、聚乙烯吡咯、烷酮等或蔗糖撒在透析袋外即可。也可将吸水剂配成30～40％浓度的溶液 ，将装有卵白液的透析袋放入即可。吸水剂用事后 ，可放入温箱中烘干或自然干燥后 ，仍可再用。
（2）冷冻干燥浓缩法
这是浓缩卵白质的一种较好的步伐 ，它既使卵白质不易变性 ，又坚持卵白质中固有的因素。它是在冰冻状态下直接升华去除水分。详细做法是将卵白液在低温下冰冻 ，然后移置干燥器内（干燥器内装有干燥剂 ，如NaOH、CaCl2和硅胶等）。密闭 ，迅速抽闲 ，并维持在抽闲状态。数小时后即可获得含有卵白的干燥粉末。干燥后的卵白质生涯利便 ，应用时可配成恣意浓度使用。也可接纳冻干机举行冷冻干燥。
（3）超滤膜浓缩法
此法是使用微孔纤维素膜通过高压将水分滤出 ，而卵白质存留于膜上抵达浓缩目的。有两种要领举行浓缩：一种是用醋酸纤维素膜装入高压过滤器内 ，在一直搅拌之下过滤。另一种是将卵白液装入透析袋内置于真空干燥器的透风口上 ，负压抽气 ，而使袋内液体渗透。
（4）凝胶浓缩法
选用孔径较小的凝胶 ，如SephadexG25或G50 ，将凝胶直接加入卵白溶液中。凭证干胶的吸水量和卵白液需浓缩的倍数而称取所需的干胶量。放入冰箱内 ，凝胶粒子吸水后 ，通过离心除去。
1.5.2卵白质的定量
定量作为生物实验室的一样平常事情之一 ，具有很是主要的意义。在生物学相关的研究中 ，无论是对卵白质表达谱的定量较量照旧卵白质理化性子的剖析 ，都建设在准确的定量这一基础之上。卵白质的快速定量要领主要依赖卵白质自己的发色基团 ，或其与其它显色剂反应爆发的紫外吸收来举行定量。现在常用的主要有直接紫外吸收法、Bradford法和Lorry法三种。
（1）直接紫外吸收法
由于卵白质中保存着含有共轭双键的酪氨酸和色氨酸 ，以是任何一个卵白质都具有280nm周围的紫外吸收峰 ，在此波长规模内 ，卵白质溶液的光密度OD280nm与其浓度呈正比关系 ，我们可以对其举行定量。紫外吸收法测定卵白质含量迅速、轻盈、不必耗样品 ，低浓度盐类不滋扰测定。因此 ，已在卵白质和酶的生化制备中普遍接纳 ，尤其在柱层析疏散纯化中 ，常用280nm举行紫外检测 ，来判断卵白质吸附或洗脱情形。但该法保存无法填补的缺陷。首先 ，关于测定那些与标准卵白质中酪氨酸和色氨酸含量差别较大的卵白质 ，有一定的误差 ，故该法适于测定与标准卵白质氨基酸组成相似的卵白质。其次 ，若样品中含有嘌呤、嘧啶等吸收紫外光的物质 ，会泛起较大滋扰。例如 ，在制备酶的历程中 ，层析柱的流出液中有时混杂有核酸 ，应予以校正。
（2）Bradford法
现在 ，实验室一样平常不接纳紫外吸收法 ，而通常接纳改良的Bradford法举行测定卵白质含量。其原理为 ，卵白质与染料考马斯亮蓝G-250连系 ，使得染料最大吸收峰从465nm变为595nm ，在一定的线性规模内 ，反应液595nm处吸光度的转变量与反应卵白量成正比 ，测定595nm处吸光度的增添即可举行卵白定量。测准时一样平常用牛血清白卵白作为标准品。该法测定要求样品中不可有能与考马斯亮蓝G-250反应显色的去污剂 ，好比Triton、NP-400、吐温等。与详细操作可参考相关试剂盒说明书。
（3）Lorry法
其原理是卵白质与碱性铜溶液中的Cu2+络和使得肽键舒展 ，从而使袒露出的酪氨酸和色氨酸在碱性铜条件下与福林试剂反应 ，爆发蓝色 ，在一定浓度规模内 ，其颜色的深浅与卵白质中的酪氨酸和色氨酸的含量成正比 ，由于种种卵白质中的酪氨酸和色氨酸的含量各不相同 ，因此在测准时需使用同种卵白质作标准。详细操作可参考相关试剂盒说明书。
一样平常而言 ，紫外吸收法适合于与色谱柱联用 ，抵达实时监控 ，然而较禁绝确。Bradford法适合于大规模测定样品 ，可是样品中不可含有太高浓度的去污剂 ，对样品的要求较高。改良的Lorry法不再倾轧去污剂 ，相对的操作就较量重大。我们需要在试验中凭证要求选用差别的定量要领。现在后两种常用的定量要领都有相关的试剂盒接纳。
1.5.3卵白的生涯
纯化的卵白往往需要在一定的生涯条件 ，以包管目的卵白的稳固 ，阻止活性损失。
卵白溶液的生涯原则：
（1）缓冲液pH 阻止靠近卵白的等电点；
（2）凭证每次使用的量分装成多管 ，这样可阻止重复冻融；
（3）加入稳固剂如甘油 ，DTT, TritonX-100等。详细操作凭证实验需要和卵白特征 ，大都卵白都可以加入终浓度为50%的甘油后－80℃生涯。
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